Introducción: la contaminación ambiental y el tabaquismo afectan el epitelio respiratorio y provocan cambios de adaptación celular. Se buscó explorar la presencia de metaplasias en sujetos fumadores y no fumadores, residentes de la Ciudad de México (CDMX) y expuestos desde su nacimiento a la contaminación ambiental de esta ciudad.
Métodos: estudio de cohorte prospectivo cuya muestra se seleccionó con base en entrevistas a domicilio que cubrieron las cinco zonas de la CDMX en las que se monitorea la calidad del aire. Se buscaron células con cambios metaplásicos e inflamatorios en citologías de esputo teñidas con la técnica Papanicolaou, además de valorar la calidad del aire de la CDMX. Se calculó riesgo relativo (RR) y riesgo atribuible (RA) en relación con la presencia de metaplasias y tabaquismo.
Resultados: se realizaron 1897 entrevistas; se obtuvo una muestra final de 30 personas en las que no hubo diferencias significativas entre sujetos con hábito tabáquico y no fumadores en cuanto a presencia de células metaplásicas (p = 0.269); la relación de células metaplásicas e inflamación tuvo una diferencia significativa en el grupo de no fumadores (p = 0.010). El RR en relación con la presencia de metaplasias en las citologías de esputo y tabaquismo fue de 1.6, y el RA fue de 0.2.
Conclusiones: la calidad del aire en la CDMX ha llevado a la población a sufrir cambios de adaptación celular en el epitelio respiratorio solo por estar expuestos a la contaminación ambiental. Los cambios metaplásicos en los no fumadores indican que la contaminación causa el mismo efecto que fumar.
World Health Organization (WHO). Report on the Global Tobacco Epidemic 2008. The MPOWER package. Geneva: World Health Organization; 2008. Disponible en http://www.who.int/tobacco/mpower/2008/en/
Franco-Marina F. Adult smoking trends in Mexico: an analysis of the Mexican National Addiction Surveys. Salud Publica Mex. 2007;49(Supl 2):5137-46.
Villatoro-Velázquez JA, Medina-Mora ME, Fleiz-Bautista C, Téllez-Rojo MM, Mendoza-Alvarado LR, Romero-Martínez M et al. Encuesta Nacional de Adicciones 2011: Reporte de Drogas. Instituto Nacional de Psiquiatría Ramón de la Fuente Muñiz (INPRFM)/Instituto Nacional de Salud Pública/Secretaría de Salud. México DF: INPRFM; 2012. Disponible en http://www.conadic.salud.gob.mx/pdfs/ENA_2011_DROGAS_ILICITAS_.pdf
Gao W, Li L, Wang Y, Zhang S, M Adcock I, Barnes PJ, et al. Bronchial epithelial cells: The key effector cells in the pathogenesis of chronic obstructive pulmonary disease? Respirology. 2015; 20:722-9.
Franco-Marina F, Villalba Caloca J, Corcho-Berdugo A; Grupo Interinstitucional de Cáncer Pulmonar. Role of active and passive smoking on lung cancer etiology in Mexico City. Salud Publica Mex. 2016;48 (Supl 1):575-82.
Trayer DS, Rubin E. Adaptación celular, lesión celular y muerte celular. En: Rubin E, Rubin R, Strayer DS. Patología: fundamentos clinicopatológicos en medicina. 6ª ed. España: Wolters Kluwer Health, Lippincott Williams & Wilkins; 2012. pp. 1-46.
Schamberger AC, Staab-Weijnitz CA, Mise-Racek N, Eickelberg O. Cigarette smoke alters primary human bronchial epithelial cell differentiation at the air-liquid interfase. Sci Rep. 2015;5: 8163.
Burns DM. Primary prevention, smoking, and smoking cessation: implications for future trends in lung cancer prevention. Cancer. 2000;89(11 Suppl): 2506-9.
Fontana RS, Carr DT, Woolner LB, Miller FT. Value of induced sputum in cytologic diagnosis of lung cancer. JAMA. 1965;192(2):134-6.
D’Urso V, Doneddu V, Marchesi I, Collodoro A, Pirina P, Giordano A, et al. Sputum analysis: Non-invasive early lung cancer detection. J Cell Physiol. 2013;228(5):945-51.
Hubers AJ, Van der Drift MA, Prinsen CFM, Witte BI, Wang Y, Shivapurkar N, et al. Methylation analysis in spontaneous sputum for lung cancer diagnosis. Lung Cancer. 2014;84(2):127-33.
Hubers AJ, Prinsen CFM, Sozzi G, Witte BI, Thunnissen E. Molecular sputum analysis for the diagnosis of lung cancer. Br J Cancer. 2013;109:530-7.
Dragonieri S, Tongoussouva O, Zanini A, Imperatori A, Spanevello A. Markers of airway inflammation in pulmonary diseases assessed by induced sputum. Monaldi Arch Chest Dis. 2009; 71(3):119-26.
Endo C, Nakashima R, Taguchi A, Yahata K, Kawahara E, Shimagaki N, et al. Inter-rater agreement of sputum cytology for lung cancer screening in Japan. Diagn Cytopathol. 2015;43(7): 545-50.
Alwahaibi NY, Alsubhi MS, Aldairi N, Alshukaili A, Bai UR. Comparison of ultrafast Papanicolaou stain with the standard Papanicolaou stain in body fluids and fine needle aspiration specimens. J Lab Physicians. 2016;8(1):19-24.
Secretaría del Medio Ambiente de la Ciudad de México (SEDEMA). Dirección de Monitoreo Atmosférico: Índice de la Calidad del Aire (horarios). México, DF: SEDEMA. Disponible en http://www.aire.df.gob.mx/default.php?opc=%27aKBhnmI=%27&opcion=aw== [Consultado el 24 de marzo de 2016].
Kaur H, Haig A, Nell A, Weir MM. Rapid rescreening of Papanicolaou test: Comparison with 10% rescreening. Canadian Journal of Pathology. 2013;5 (3):103-9.
Anjuman N, Li N, Guarnera M, Stass AA, Jiang F. Evaluation of lung flute in sputum samples for molecular analysis of lung cancer. Clin Transl Med. 2013;2(1):2-15.
Byers T, Wolf HJ, Franklin WA, Braudrick S, Merrick DT, Shroyer KR, et al. Sputum cytologic atypia predicts incident lung cancer: defining latency and histologic specificity. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 2008;17(1):158-62.
Cho HY, Hotchkiss JA, Harkema JR. Inflammatory and epithelial responses during the development of ozone-induced mocus cell metaplasia in the nasal epithelium of rats. Toxicol Sci. 1999;51:135-45.
Calderón-Garcidueñas L, Osnaya N, Rodríguez-Alcaraz A, Villarreal-Calderón A. DNA damage in nasal respiratory epithelium form children exposed to urban pollution. Environ Mol Mutagen. 1997; 30(1):11-20.
Calderón-Garcidueñas L, Osorno-Velázquez A, Bravo-Álvarez H, Delgado-Chávez R, Barrios-Márquez R. Histopathologic changes of the nasal mucosa in southwest metropolitan Mexico City inhabitants. Am J Pathol. 1992;140(1):225-32.
Calderón-Garcidueñas L, Roy-Ocotla G. Nasal cytology in southwest metropolitan Mexico City inhabitants: a pilot intervention study. Environ Health Persp. 1993;101(2):138-44.
Viveros-Añorbe LM, Rivera-Cruz JM. Cambios histopatológicos en mucosa nasal de individuos expuestos a la contaminación ambiental en el Distrito Federal. Informe de 33 casos. An Med Asoc Med Hosp ABC. 1999;44(3):127-31.
Marlier ME, Jina AS, Kinney PL, DeFries RS. Extreme air pollution in global megacities. Curr Clim Change Rep. 2016;2(1):15-27.
Rodríguez S, Huerta G, Reyes H. A study of trends for Mexico City ozone extremes: 2001-2014. Atmósfera. 2016;29(2):107-20.
Por contingencia restringen circulación. El Universal [Internet]. 15 03 2016. Disponible en http://www.eluniversal.com.mx/articulo/metropoli/df/2016/03/15/por-contingencia-restringen-circulacion [Consultado el 20 de marzo de 2016].
Arbex MA, Santos UP, Martins LC, Saldiva PHN, Pereira LAA, Braga ALF. A polução do ar e o sistema respiratório. J Bras Pneumol. 2012;38(5):643-55.
Secretaría del Medio Ambiente, Gobierno del Distrito Federal. Programa estratégico forestal del Distrito Federal (PEF-DF) 2006-2025. México, DF: Secretaría del Medio Ambiente; 2006. Disponible en http://www.conafor.gob.mx:8080/documentos/docs/12/858Programa%20Estratégico%20Forestal %20del%20Distrito%20Federal.pdf [Consultado el 22 de abril de 2016].
Nowak DJ, Dwyer JF, Childs G. Los beneficios y costos del enverdecimiento urbano. En: Krishnamurthy L, Rente Nascimento J (eds.), Áreas Verdes Urbanas en Latinoamérica y el Caribe. Chapingo, México: Universidad Autónoma de Chapingo; 1997. pp. 17-38.
Pérez-S. I. “Hoy no circula” sabatino, no soluciona el problema de la contaminación: Héctor Riveros. Ciencia UNAM. 27 de agosto de 2014. Ambiente y naturaleza. Disponible en http://ciencia.unam.mx/leer/380/“Hoy_no_circula”_sabatino_no_soluciona _el_problema_de_la_contaminacion_Hector_Riveros [Consultado el 2 de mayo de 2016].